Одним из актуальных направлений при изучении механизмов развития патологий, возможности тестирования новых фармакологических препаратов, а также внедрении альтернативных способов терапии болезней является использование лабораторных животных, среди которых чаще всего выбираются грызуны. Расстройства аутистического спектра требуют изучения не только генетических и нейробиологических механизмов возникновения, но и возможности ранней диагностики и облегчения симптоматики. Цель представленной работы — провести обзор имеющихся методов создания экспериментальных моделей расстройств аутистического спектра и современных тестов, необходимых для оценки поведенческих паттернов животных при проведении биомедицинских исследований по изучению аутизма. Поиск источников литературы осуществляли в базах данных PubMed и РИНЦ по следующим словарным запросам: «расстройства аутистического спектра», «модели на грызунах», «поведенческие модели», «фармакологические модели расстройств аутистического спектра», «autism», «autism spectrum disorder» и др. Временной горизонт поиска распространялся на 2016–2023 гг. Рассмотрены современные подходы к моделированию расстройств аутистического спектра на грызунах. Отдельное место занимает описание фармакологических и поведенческих моделей. Большое внимание уделяется комплексному изучению поведения животных для оценки степени выраженности симптомов аутизма, а именно нарушений социального поведения, проявлений стереотипного поведения и расстройств коммуникационных способностей.
Идентификаторы и классификаторы
Аутизм — это нарушение развития нервной системы в пренатальном онтогенезе, характеризующееся дефицитом социальных и коммуникативных навыков, стереотипным поведением. Кроме того, при аутизме могут наблюдаться повышенная тревожность, дефицит внимания, нарушение когнитивных функций. В настоящее время нет единой концепции возникновения аутизма, однако установлено, что в 40% случаев наблюдаются генетические изменения. На сегодняшний день описано более 800 генов, ассоциированных с расстройствами аутистического спектра, бóльшая часть которых контролирует синаптогенез, синаптическую пластичность и передачу. Помимо генетических, в развитие аутизма вовлечены эпигенетические факторы [1, 2].
Список литературы
1. Чернов А.Н. Патофизиологические механизмы развития аутизма у детей // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2020. № 3. С. 97–108. [Chernov A.N. Patofiziologicheskie mekhanizmy razvitiya autizma u detej // Zhurnal nevrologii i psihiatrii im. S.S. Korsakova. 2020. N. 3. P. 97–108. (In Russ.)].
2. Rajamani K.T., Wagner S., Grinevich V., Harony-Nicolas H. Oxytocin as a Modulator of Synaptic Plasticity: Implications for Neurodevelopmental Disorders // Frontiers in Synaptic Neuroscience. 2018. N. 10. Р. 17.
3. Коваленко И.Л., Галямина А.Г., Смагин Д.А. и др. Коэкспрессия глутаматергических генов и генов аутистического спектра в гиппокампе у самцов мышей с нарушением социального поведения // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2020. № 2. С. 191–199. [Kovalenko I.L., Galyamina A.G., Smagin D.A. et al. Koekspressiya glutamatergicheskih genov i genov autisticheskogo spektra v gippokampe u samcov myshej s narusheniem social’nogo povedeniya // Vavilovskij zhurnal genetiki i selekcii. 2020. N. 2. P. 191–199. (In Russ.)].
4. Иванова Д.В., Сёмина И.И., Зиганшин А.У. Соматические нарушения при аутизме как один из факторов нарушения поведения и социального взаимо- действия // Казанский медицинский журнал. 2019. № 4. С. 689–694. [Ivanova D.V., Syomina I.I., Ziganshin A.U. Somaticheskie narusheniya pri autizme kak odin iz faktorov narusheniya povedeniya i social’nogo vzaimodejstviya // Kazanskij medicinskij zhurnal. 2019. N. 4. P. 689–694. (In Russ.)].
5. Сёмина И.И., Мухарямова Л.М., Сабиров И.С. и др. Современное состояние проблемы расстройств аутистического спектра — некоторые медико-биологические и социально-гуманитарные аспекты // Казанский медицинский журнал. 2019. № 6. C. 918– 929. [Syomina I.I., Muharyamova L.M., Sabirov I.S. et al. Sovremennoe sostoyanie problemy rasstrojstv autisticheskogo spektra — nekotorye mediko-biologicheskie i social’no-gumanitarnye aspekty // Kazanskij medicinskij zhurnal. 2019. N. 6. Р. 918–929. (In Russ.)].
6. Pavăl D.A. Dopamine hypothesis of autism spectrum disorder // Dev. Neurosci. 2017. N. 5. Р. 355–360. DOI: 10.1159/000478725.
7. Гречанина Ю.Б. Аутизм как поликаузальное расстройство // Клиническая генетика и пренатальная диагностика. 2019. № 6. С. 3–19. [Grechanina Yu.B. Autizm kak polikauzal’noe rasstrojstvo // Klinicheskaya genetika i prenatal’naya diagnostika. 2019. N. 6. P. 3–19. (In Russ.)].
8. Переверзева Д.С., Горбачевская Н.Л. Нейробиологические маркеры ранних стадий расстройств аутистического спектра // Журнал высшей нервной деятельности. 2016. № 3. С. 289–301. [Pereverzeva D.S., Gorbachevskaya N. L. Nejrobiologicheskie markery rannih stadij rasstrojstv autisticheskogo spectra // Zhurnal vysshej nervnoj deyatel’nosti. 2016. N. 3. P. 289–301. (In Russ.)].
9. Мукаетова-Ладинска Е.Б., Симашкова Н.В., Мукаетова М.С. и др. Расстройства аутистического спектрау детей и взрослых: подходы к проблеме в разных странах // Журнал неврологии и психиатрии. 2018. № 12. С. 92–99. [Mukaetova-Ladinska E.B., Simashkova N.V., Mukaetova M.S. et al. Rasstrojstva autisticheskogo spektra u detej i vzroslyh: podhody k probleme v raznyh stranah // ZHurnal nevrologii i psihiatrii. 2018. N. 12. Р. 92–99. (In Russ.)].
10. Макарова М.Н., Матичин А.А., Матичина А.А. и др. Принципы выбора животных для научных исследований. Сообщение 1. Выбор модельных организмов на основании филогенетических связей // Лабораторные животные для научных исследований. 2022. № 2. С. 58–70. [Makarova M.N., Matichin A.A., Matichina A.A. et al. Principy vybora zhivotnyh dlya nauchnyh issledovanij. Soobshchenie 1. Vybor model’nyh organizmov na osnovanii filogeneticheskih svyazej // Laboratornye zhivotnye dlya nauchnyh issledovanij. 2022. N. 2. Р. 58–70. (In Russ.)].
11. Исламов Р.А. Методология эксперимента с использованием лабораторных животных // Вестник КазНМУ. 2016. № 1. С. 489–492. [Islamov R.A. Metodologiya eksperimenta s ispol’zovaniem laboratornyh zhivotnyh // Vestnik KazNMU. 2016. № 1. Р. 489–492. (In Russ.)].
12. Семёнова А.А., Лопатина О.Л., Салмина А.Б. Модели аутизма и методики оценки аутистически-подобного поведения у животных // Журнал высшей нервной деятельности. 2020. № 2. С. 147 162. [Semyonova A.A., Lopatina O.L., Salmina A.B. Modeli autizma i metodiki ocenki autisticheski-podobnogo povedeniya u zhivotnyh // ZHurnal vysshej nervnoj deyatel’nosti. 2020. N. 2. Р. 147–162. (In Russ.)].
13. Лабораторные крысы: содержание, разведение и биоэтические аспекты использования в экспериментах по физиологии поведения: учебное пособие / В.И. Беляков, Е.М. Инюшкина, Д.С. Громова и др. Самара: Издательство Самарского университета, 2021. 96 с. [Laboratornye krysy: soderzhanie, razvedenie i bioeticheskie aspekty ispol’zovaniya v eksperimentah po fiziologii povedeniya: uchebnoe posobie / V.I. Belyakov, E.M. Inyushkina, D.S. Gromova et al. Samara: Izdatel’stvo Samarskogo universiteta, 2021. 96 p. (In Russ.)].
14. Иванова Д.В., Хабиров Р.А., Зиганшин А.У. Активность ферментов, разрушающих внеклеточные нуклеотиды, в тканях крыс с вальпроатной моделью аутизма // Казанский медицинский журнал. 2024. Т. 105. № 1. С. 84–89. [Ivanova D.V., Habirov R.A., Ziganshin A.U. Aktivnost’ fermentov, razrushayushchih vnekletochnye nukleotidy, v tkanyah krys s val’proatnoj model’yu autizma // Kazanskij medicinskij zhurnal. 2024. Vol. 105. N. 1. Р. 84–89. (In Russ.)].
15. Эль-Ансари А. ГАМК, дефициты нейротрансмиттера глутамата при аутизме и их нейтрализация как новая гипотеза эффективной стратегии лечения // Аутизм и нарушения развития. 2020. Т. 18. № 3. C. 46–63. [El’-Ansari A. GAMK, deficity nejrotransmittera glutamata pri autizme i ih nejtralizaciya kak novaya gipoteza effektivnoj strategii lecheniya // Autizm i narusheniya razvitiya. 2020. Vol. 18. N. 3. P. 46–63. (In Russ.)].
16. Kudryavtseva N.N., Kovalenko I.L., Smagin D.A. et al. Abnormality of social behavior and dysfunction of autism related gene expression developing under chronic social defeat stress in male mice // Eur. Neuropsychopharm. 2017. N. 4. Р. 678–679.
17. Kudryavtseva N.N., Bakshtanovskaya I.V., Koryakina L.A. Social model of depression in mice of C57BL/6J strain // Pharmacol Biochem Behav. 1991. N. 2. Р. 315–320
Выпуск
Другие статьи выпуска
Цель работы — изучить реабсорбцию белков в почках озерных лягушек (Pelophylax ridibundus) при гиперволемии, дегидратации и действии аргинин-вазотоцина (АВТ), антидиуретического гормона амфибий. Использовали методы иммуногистохимии, конфокальной микроскопии и автоматизированного анализа флуоресцентных сигналов. На фиксированных препаратах почек регистрировали свечение в проксимальных канальцах рецептора эндоцитоза мегалина и введенных белков — лизоцима и зеленого флуоресцентного белка (GFP). Рассчитывали интенсивность сигналов, число флуоресцентных канальцев и эндоцитозных везикул, а также процент колокализации белков с мегалином. Дегидратация и инъекции АВТ приводили, как правило, к снижению показателей реабсорбции. Данные сопоставлены со сходными эффектами гипернатриемии, а также с показателями крови и функции почек, продемонстрированными ранее у лягушек в аналогичных экспериментальных условиях. Можно полагать, что у лягушек увеличение концентрации осмотически активных веществ в крови и первичной моче, а также уменьшение скорости клубочковой фильтрации приводит к снижению захвата и скорости внутриклеточного транспорта белков в клетках проксимальных канальцев.
Интенсивность исследований и применения природного биологически активного вещества муцина улиток в фармакологии и косметологии сегодня позволяет говорить о его масштабной отраслевой потребности в ближайшем будущем. В связи с этим актуальна разработка высокопроизводительных методов получения улиточной слизи, предполагающих многократную экстракцию секрета на протяжении жизни моллюска без причинения вреда его физиологическому состоянию. В работе предложен и исследован способ нетравмирующего воздействия на моллюсков, позволяющий стимулировать секреторную функцию животных и повысить производительность получения муцина. На примере улиток вида Helix pomatia с помощью разработанного и изготовленного опытного образца устройства для получения муцина в лабораторных условиях подтверждена возможность применения пульсирующего светодиодного излучения в видимом диапазоне спектра в качестве нетравмирующего воздействия, повышающего производительность получения секрета. Установлен наиболее эффективный режим светового воздействия. Показана эффективность сочетания пульсирующего светового воздействия с другим нетравмирующим фактором — механическим воздействием текстуры опорной поверхности на ногу моллюска. Приведены фото, иллюстрирующие основные конструктивные и исполнительные узлы (корпус, крышка-шасси, плата контроллера, светодиодный светильник, опорная пластина с ребристой поверхностью) экспериментального устройства для получения муцина.
Для обеспечения комфортного содержания лабораторных яванских макак, которые играют важную роль в доклинических исследованиях, необходимо уделить внимание нескольким ключевым аспектам. Важно обеспечить подходящее для данного вида животных размещение, устанавливать и контролировать оптимальные параметры микроклимата мест содержания, составлять сбалансированный по необходимым нутриентам рацион кормления, подбирать и предоставлять различные виды среды обогащения, а также учитывать особенности репродуктивной системы для успешного воспроизводства животных и получения здорового потомства.
Поиск публикаций выполняли в базах данных PubMed и Google Scholar. В обзор включали публикации, доступные для поиска на 09.07.2024 г. В результате настоящего обзора были обозначены и обобщены данные литературы по лабораторным яванским макакам, которые описывают условия размещения животных; допустимые параметры микроклимата в местах содержания (температура, влажность, кратность воздухообмена, освещенность и цикл освещения); предоставление различных видов обогащения среды; характерное поведение макак в популяции; особенности репродуктивной системы самцов и самок; половое поведение животных в период садки, включая оптимальный период для их спаривания; период беременности и родов; особенности макак в уходе за потомством. При анализе данных литературы были собраны основные рекомендации по содержанию яванских макак с учетом всех зоотехнических потребностей при их размещении и воспроизводстве.
Доклиническую оценку специфической активности инфузионных растворов проводят на крупных лабораторных животных, использование которых в скрининговых исследованиях затруднено в связи с большими материальными и временными затратами. В настоящее время коллективом авторов (Шперлинг И. А. и др.) разработана модель острой кровопотери на крысах, в которой критериями специфической активности инфузионных растворов рассматриваются расчетные показатели: приведенный ударный объем крови (ПУдОК) и показатель эффективности инфузии (ПЭИ). Данные показатели рассматриваются в качестве косвенных аналогов ударного объема сердца — основного показателя функции сердечной деятельности. Динамика данных показателей позволяет комплексно оценить эффективность механизмов поддержания гемодинамики при острой кровопотере и ее восполнении в скрининговых исследованиях на мелких лабораторных животных. В связи с этим проведено исследование с целью определения возможности использования приведенного ударного объема крови и показателя эффективности инфузии в качестве критериев оценки специфической активности инфузионных растворов на модели острой кровопотери у крупных лабораторных животных. Содержание животных и все манипуляции с ними одобрены локальным этическим комитетом. У наркотизированных (внутримышечно золетил 100; ингаляционно изофлуран) самцов свиней (массой около 50 кг) проводили эксфузию крови через яремную вену в объеме 45–50% объема циркулирующей крови (ОЦК) (исходя из ОЦК, равного 7% массы животного) со скоростью 50 мл/мин до установления стойкой артериальной гипотензии. Далее животные были распределены на 2 группы по 10 особей: контрольную (без инфузии) и опытную (восполнение ОЦК реополиглюкином, который вводили в яремную вену через 15 мин после окончания эксфузии крови). В динамике эксперимента регистрировали частоту сердечных сокращений (ЧСС) и среднее артериальное давление (АДср), проводили ЭхоКГ, измерение ударного объема (УО) крови, рассчитывали ПУдОК и ПЭИ. Статистический анализ полученных данных выполняли с помощью программного обеспечения Statistica 10.0. Сравнительный анализ позволил установить тесную корреляционную связь между исследуемыми показателями гемодинамики (ПУдОК и ПЭИ) и УО, измеренным с помощью ЭхоКГ. На основе полученных результатов дополнительно разработаны прогностические признаки благоприятного и неблагоприятного течения периода острой кровопотери. Рассмотренные в настоящем исследовании расчетные показатели (ПУдОК и ПЭИ) являются корректными индексами, отражающими гемодинамику при острой кровопотере и эффективность ее компенсации вливанием инфузионных растворов. Данные показатели не требуют фактического подтверждения УО крови, являющегося одним из ключевых показателей эффективности деятельности сердца, и могут быть использованы в экспериментах по оценке специфической активности инфузионных растворов на модели острой кровопотери у крупных лабораторных животных, в частности, свиней.
Гематологический анализ, или общий анализ крови, направленный на оценку качественного и количественного состава крови позволяет учитывать широкий спектр показателей. Это один из наиболее простых и часто используемых анализов, позволяющий осуществить мониторинг здоровья лабораторных животных, а также оценивать ход эксперимента. С его помощью можно получить характеристику всех форменных элементов крови: эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, оценить их процентное соотношение, форму и вид, обнаружить патологические формы клеток, клеток-предшественников или различные включения. Данный вид анализа может указать на ранние изменения состояния здоровья организма, определить такие состояния, как анемия/полицитемия, тромбоцитопения/тромбоцитоз и лейкопения/лейкоцитоз, которые могут быть симптомами какого-либо заболевания или выступать в качестве самостоятельных патологий. Именно поэтому в каждом научном центре необходимо иметь референтные интервалы гематологических показателей крови здоровых лабораторных животных, учитывающие критические преаналитические, аналитические и постаналитические особенности. Целью данной работы являлось установление референтных интервалов гематологических показателей крови как самцов, так и самок мышей, песчанок, хомяков, крыс, морских свинок и кроликов, как широко используемых тест-систем в биомедицинских исследованиях. Возраст всех животных соответствовал диапазону половой зрелости, в исследование были включены самцы и небеременные и нерожавшие самки без учета фазы менструального цикла. Данные, используемые в работе, были получены от интактных животных за временной период январь—июнь 2024 г. в АО «НПО «ДОМ ФАРМАЦИИ». Вся работа была поделена на два этапа: оценка показателей на гематологическом анализаторе и подсчет лейкоцитарной формулы в ходе микроскопического анализа. В цельной крови животных посредством гематологического анализатора регистрировали такие показатели, как общее число эритроцитов, гематокрит, концентрация гемоглобина, средний объем эритроцитов в общем объеме пробы, среднее содержание гемоглобина в эритроците, средняя концентрация гемоглобина в эритроците, общее число тромбоцитов, общее число лейкоцитов, число лимфоцитов и гранулоцитов. При подсчете лейкоцитарной формулы регистрировались такие показатели, как содержание палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов, эозинофилов, моноцитов, базофилов и лимфоцитов. При сравнении полученных интервалов с референтными значениями из источников литературы было показано, что в целом диапазоны рассматриваемых показателей схожи, но присутствуют и различия. Наибольшие различия были связаны с количеством эритроцитов, тромбоцитов, моноцитов, лимфоцитов, нейтрофилов и концентрацией гемоглобина. Референтные интервалы, рассчитанные в ходе исследования, могут быть полезным инструментом мониторинга состояния здоровья лабораторных животных в ходе проведения доклинических экспериментов.
Мочекаменная болезнь (уролитиаз) характеризуется образованием минерализованных конкрементов в мочевыводящих путях и является одним из самых распространенных заболеваний современного человека. Физико-химические реакции, составляющие основу патогенеза формирования камней, а также роль регулирующих молекул в данном процессе до конца не изучены, что затрудняет разработку эффективных лекарственных препаратов для лечения и профилактики данной патологии и в то же время обусловливает актуальность исследования возможных моделей уролитиаза на лабораторных животных. В данной работе представлены результаты моделирования мочекаменной болезни у самцов крыс и кроликов при помощи введения этиленгликоля (ЭГ) с питьевой водой. ЭГ обладает литогенным действием, поскольку в результате его метаболизма синтезируется большое количество оксалат-ионов, которые, соединяясь с ионами кальция в моче, образуют нерастворимые соли. Возможность формирования патологии исследовали в следующих режимах дозирования индуктора: введение крысам 1% ЭГ в течение 28 дней (n=20) и 1,5% ЭГ в течение 9 дней (n=20); кроликам 1,5% ЭГ в течение 28 дней (n=16) и 4% ЭГ в течение 13 дней (n=16). В рамках данной работы у всех экспериментальных животных регистрировали потребление воды, массу тела, проводили ежедневное клиническое наблюдение, в сыворотке крови оценивали уровень альбумина, общего белка, кальция, фосфора, мочевины, креатинина, аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, щелочной фосфатазы и лактатдегидрогеназы, в пробах мочи исследовали содержание кристаллов, креатинина, мочевины, белка и кальция. Почки крыс и кроликов подвергались гистологическому исследованию. На основании полученных данных проведена оценка эффективности формирования уролитиаза у крыс и кроликов в исследованных режимах, по результатам которой наиболее удачным признано введение 1% ЭГ крысам в течение 28 дней. При необходимости использовать кроликов в качестве тест-системы следует помнить о слабой выраженности отклонений лабораторных параметров от физиологической нормы.
Катехол-О-метилтрансфераза (KОМТ) является одним из основных ферментов млекопитающих, участвующих в метаболизме катехоламинов, таких как дофамин, норадреналин. Процесс метаболизма катехоламинов важен для регуляции нормального функционирования нервной системы, включая эмоции и реакции на стресс. Участие KОМТ в функционировании нервной системы делает животных с инактивированным геном comt удобной моделью для изучения психических расстройств. С помощью CRISPR/Cas9-технологии была создана новая линия мышей с нокаутом гена comt. Измерение концентрации нейромедиаторов и их метаболитов в стриатуме и префронтальной коре у мышей с нокаутом гена comt и мышей дикого типа проводили методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с использованием внутреннего стандарта 2,3-дигидроксибензойной кислоты, не встречающейся в нативной ткани, в концентрации 100 нг/мл. У гомозиготных мышей с нокаутом гена comt наблюдалось отсутствие гомованилиновой кислоты — конечного продукта метаболизма дофамина в префронтальной коре и стриатуме, в то время как уровень промежуточного продукта 3,4-дигидроксифенилуксусной кислоты был выше. Уровень норадреналина в префронтальной коре оказался выше, тогда как в стриатуме достоверных различий между нокаутными мышами и мышами дикого типа не обнаружено. Несмотря на соответствующие изменения в метаболитах катехоламинов, концентрации серотонина и дофамина значительно не различались между группами мышей с нокаутом гена comt и мышей дикого типа.
Издательство
- Издательство
- НПО ДОМ ФАРМАЦИИ
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- 188663, Ленинградская обл, Всеволожский р-н, гп Кузьмоловский, ул Заводская, д 3 к 245, ком 4/34
- Юр. адрес
- 188663, Ленинградская обл, Всеволожский р-н, гп Кузьмоловский, ул Заводская, д 3 к 245, ком 4/34
- ФИО
- Макарова Марина Николаевна (ДИРЕКТОР)
- Контактный телефон
- +7 (___) _______